سال 19، شماره 75 - ( 6-1399 )
سال 19 شماره 75 صفحات 91-78 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Alimahdi F, Shahrokhi N, Khaksari Hadad M, Asadikaram G, Abolhasani M. Effect of shilajit on the levels of pro-inflammatory and anti inflammatory cytokines in ulcerative colitis induced by acetic acid in male rats. J. Med. Plants 2020; 19 (75) :78-91
URL: http://jmp.ir/article-1-2376-fa.html
URL: http://jmp.ir/article-1-2376-fa.html
علی مهدی فاطمه، شاهرخی نادر، خاکساری حداد محمد، اسدی کرم غلامرضا، ابوالحسنی مسلم. اثرات شیلاجیت بر مقادیر سایتوکین‌های پیش‌التهابی و ضدالتهابی در کولیت اولسراتیو ناشی از اسید استیک در موش‌های صحرایی نر. فصلنامه گياهان دارویی. 1399; 19 (75) :78-91
فاطمه علی مهدی1 
، نادر شاهرخی* 2، محمد خاکساری حداد3 ، غلامرضا اسدی کرم4 ، مسلم ابوالحسنی5
، نادر شاهرخی* 2، محمد خاکساری حداد3 ، غلامرضا اسدی کرم4 ، مسلم ابوالحسنی5
1- گروه فیزیولوژی پزشکی، دانشکده علوم پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی، کرمان، ایران
2- پژوهشکده علوم پایه و فیزیولوژی، دانشکده علوم پزشکی،دانشگاه علوم پزشکی، کرمان، ایران ، nshahrokhisar@yahoo.com
3- پژوهشکده علوم پایه و فیزیولوژی، دانشکده علوم پزشکی،دانشگاه علوم پزشکی، کرمان، ایران
4- مرکز تحقیقات غدد و متابولیسم، پژوهشکده علوم پایه و بیوشیمی، دانشگاه علوم پزشکی، کرمان، ایران
5- گروه بیوشیمی،دانشکده پزشکی،دانشگاه علوم پزشکی کرمان،ایران
2- پژوهشکده علوم پایه و فیزیولوژی، دانشکده علوم پزشکی،دانشگاه علوم پزشکی، کرمان، ایران ، nshahrokhisar@yahoo.com
3- پژوهشکده علوم پایه و فیزیولوژی، دانشکده علوم پزشکی،دانشگاه علوم پزشکی، کرمان، ایران
4- مرکز تحقیقات غدد و متابولیسم، پژوهشکده علوم پایه و بیوشیمی، دانشگاه علوم پزشکی، کرمان، ایران
5- گروه بیوشیمی،دانشکده پزشکی،دانشگاه علوم پزشکی کرمان،ایران
چکیده: (7256 مشاهده)
مقدمه: میزان سایتوکین‌هایی مثل IL-13, IL-4, IL-1B, TNF-αو IL-10 در کولون افراد مبتلا به کولیت اولسرلتیو نسبت به افراد سالم تغییر می‌کنند. مطالعات قبلی نشان می‌دهند که شیلاجیت کولیت اولسراتیو را بهبود بخشیده، بنابراین این احتمال داده شد که شیلاجیت با تأثیر بر میزان سایتوکین توانسته کولیت اولسراتیو را بهبود بخشد. هدف: هدف مطالعه حاضر بررسی اثرات شیلاجیت بر میزان IL-13, IL-4, IL-1B, TNF-αو IL-10 در کولیت اولسراتیو می‌باشد. روش بررسی: در این مطالعه‌ی تجربی، 49 سر موش صحرایی آزمایشگاهی سفید جنس نر با وزن 250-180گرم به طور تصادفی به 7 گروه تقسیم شدند که شامل گروه‌های شم، کولیت اولسراتیو، حلال خوراکی، شیلاجیت خوراکی، سولفاسالازین، حلال داخل مقعدی، شیلاجیت داخل مقعدی بودند. برای ایجاد کولیت اولسراتیو 2 سی سی اسید استیک (4 درصد) به روش تنقیه تجویز شد. 4 روز پس از ایجاد کولیت، به مدت 4 روز شیلاجیت با دوز 250 میلی‌گرم بر کیلوگرم به صورت گاواژ و یا تنقیه، سولفاسالازین با دوز 250 میلی‌گرم بر کیلوگرم به شکل گاواژ تجویز شد. نتایج: گروه شیلاجیت خوراکی IL-13, IL-10 را افزایش و IL-1β, TNF-α را کاهش داد. شیلاجیت میزان IL-4 IL-13, IL-10, TNF-α را به مقادیر نرمال در گروه شم نزدیک کرد. نتیجه‌گیری: با توجه به اینکه نسبت وزن روده به وزن بدن حیوان در گروه‌های شیلاجیت نسبت به گروه سولفاسالازین کمتر بود می‌توان نتیجه گرفت که شیلاجیت با تغییر مناسب‌تر در مقادیر سایتوکین‌ها در مقایسه با سولفاسالازین توانسته است التهاب را بیشتر کاهش دهد.
نوع مطالعه: پژوهشی |
دریافت: 1397/9/4 | پذیرش: 1398/5/15 | انتشار: 1399/6/16
دریافت: 1397/9/4 | پذیرش: 1398/5/15 | انتشار: 1399/6/16
فهرست منابع
1. Fuss IJ, Neurath M, Boirivant M, Klein JS, De La Motte C, Strong SA and et al. Disparate CD4+ lamina propria (LP) lymphokine secretion profiles in inflammatory bowel disease. Crohn's disease LP cells manifest increased secretion of IFN-gamma, whereas ulcerative colitis LP cells manifest increased secretion of IL-5. J. Immunol. 1996; 157(3): 1261-70. [DOI:10.1097/00024382-199703001-00528]
2. Sartor RB. Current concepts of the etiology and pathogenesis of ulcerative colitis and Crohn's disease. Gastroenterology Clin. North Am. 1995; 24(3): 475-507.
3. Katzung BG, Masters SB, Trevor AJ. Basic & clinical pharmacology. 2004; 10: 1033-52.
4. Galloway JB, Hyrich KL, Mercer LK, Dixon WG, Fu B, Ustianowski AP and et al. Anti-TNF therapy is associated with an increased risk of serious infections in patients with rheumatoid arthritis especially in the first 6 months of treatment: updated results from the British Society for Rheumatology Biologics Register with special emphasis on risks in the elderly. J. Rheumatol. 2010; 50(1): 124-31. [DOI:10.1093/rheumatology/keq242]
5. Musa RB, Usha L, Hibbeln J and Mutlu EA. TNF inhibitors to treat ulcerative colitis in a metastatic breast cancer patient: A case report and literature review. WJG. 2014; 20(19): 5912. [DOI:10.3748/wjg.v20.i19.5912]
6. Descamps-Latscha B, Herbelin A, Nguyen AT, Roux-Lombard P, Zingraff J, Moynot A and et al. Balance between IL-1 beta, TNF-alpha, and their specific inhibitors in chronic renal failure and maintenance dialysis. Relationships with activation markers of T cells, B cells, and monocytes. J. Immunol. 1995; 154(2): 882-92.
7. Ghaaazi Firozsalari F, Shahrokhi N, Khaksari Hadad M, Asadikaram G and Atashbar J. Effect of Shilajit on the Levels of Pro-inflammatory and Anti-inflammation Cytokines in Hepatic Injury in Male Rats. J. Mazandaran Univ. Med. Sci. 2018; 27(159): 1-13.
8. Saxena A, Kaur K, Hegde S, Kalekhan FM, Baliga MS and Fayad R. Dietary agents and phytochemicals in the prevention and treatment of experimental ulcerative colitis. J. Tradit. Complement. Med. 2014; 4(4): 203-17. [DOI:10.4103/2225-4110.139111]
9. Neelima S, Babu TN, Kumar MP and Kumar CH. Effect of shilajit on acetic acid induced inflammatory bowel disease in rats. IJARMPS. 2017; 8(2): 147-50.
10. Aziz S, Khaliq S, Ghani KS, Irshad M, Green IR and Hussain H. Phytochemical Screening and Biological Studies of Shilajit (Asphaltum). International Journal of Phytomedicine 2017; 9(1): 15-9. [DOI:10.5138/09750185.1883]
11. Mirza MA, Alam MN, Faiyazuddin M, Mahmood D, Bairwa R and Mustafa G. Shilajit: An ancient panacea. Int. J. Curr. Pharmaceut. Rev. Res. 2010; 1: 2-11.
12. Rege A, Juvekar P and Juvekar A. In vitro antioxidant and anti-arthritic activities of Shilajit. Int. J. Pharm. Pharm. Sci. 2012; 4(2): 650-3.
13. Shahrokhi N, Keshavarzi Z and Khaksari M. Ulcer healing activity of Mumijo aqueous extract against acetic acid induced gastric ulcer in rats. J. Pharm. Bioallied. Sci. 2015; 7(1): 56. [DOI:10.4103/0975-7406.148739]
14. Mona S, Neha S, Chhavi S, Ajay K and KM S. Asphaltum panjabinum: a new antioxidant in urolithiasis: a clinical study. JARBS. 2014; 6(2): 118-21.
15. Fuss IJ, Strober W. The role of IL-13 and NK T. cells in experimental and human ulcerative colitis. J. Mucosal. Immunology Res. 2008; 1(01): S31. [DOI:10.1038/mi.2008.40]
16. Berman D, Parker SM, Siegel J, Chasalow SD, Weber J, Galbraith S and et al. Blockade of cytotoxic T-lymphocyte antigen-4 by ipilimumab results in dysregulation of gastrointestinal immunity in patients with advanced melanoma. Cancer Immun. 2010; 10(1): 11.
17. Reinacker H, Steffen M, Witthoeft T, Pflueger I, Schreiber S, MacDermott R and et al. Enhanced secretion of tumor necrosis factor-alpha, IL-6, and IL-1 beta by isolated lamina propria mononuclear cells from patients with ulcerative colitis and Crohn's disease. Clin. Exp. Immunol. 1993; 94: 174-81. [DOI:10.1111/j.1365-2249.1993.tb05997.x]
18. Li M-C and He S-H. IL-10 and its related cytokines for treatment of inflammatory bowel disease. WJG. 2004; 10(5): 620. [DOI:10.3748/wjg.v10.i5.620]
19. Zurawski G and de Vries JE. Interleukin 13, an interleukin 4-like cytokine that acts on monocytes and B cells, but not on T cells. Immunology Today 1994; 15(1): 19-26. [DOI:10.1016/0167-5699(94)90021-3]
20. de Waal Malefyt R, Figdor CG, Huijbens R, Mohan-Peterson S, Bennett B and Culpepper J. Dang W, Zurawski G and de Vries JE. Effects of IL-13 on phenotype, cytokine production, and cytotoxic function of human monocytes. Comparison with IL-4 and modulation by IFN-gamma or IL-10. J. Immunol. 1993; 151(11): 6370-81.
21. Inoue S, Matsumoto T, Iida M, Mizuno M, Kuroki F, Hoshika K and et al. Characterization of cytokine expression in the rectal mucosa of ulcerative colitis: correlation with disease activity. AJG. 1999; 94(9): 2441-6. [DOI:10.1111/j.1572-0241.1999.01372.x]
22. Heller F, Florian P, Bojarski C, Richter J, Christ M, Hillenbrand B and et al. Interleukin-13 is the key effector Th2 cytokine in ulcerative colitis that affects epithelial tight junctions, apoptosis, and cell restitution. Gastroenterol. 2005; 129(2): 550-64. [DOI:10.1016/j.gastro.2005.05.002]
23. Shahrokhi N, Asadikaram GH and Amirafzali F. Protective effect of Mumiju against acetic acid-induced ulcerative colitis in rats. AJP. 2018; 8(5): 457.
24. Kumar V, Abbas AK, Fausto N and Aster JC. Robbins and Cotran Pathologic Basis of Disease, Professional Edition E-Book: Elsevier Health Sciences, 2014.
25. Ran ZH, Chen C, Xiao SD. Epigallocatechin-3-gallate ameliorates rats colitis induced by acetic acid. Biomed Pharmacothe. 2008; 62(3): 189-96. [DOI:10.1016/j.biopha.2008.02.002]
26. Phaechamud T, Charoenteeraboon J, Wetwitayaklung P, Limmatvapirat C and Srichan T. Some Biological Activities and Safety of Mineral Pitch. SUSTJ. 2008; 2(2): 7-17.
27. Ran ZH, Chen C and Xiao SD. Epigallocatechin-3-gallate ameliorates rats colitis induced by acetic acid. Biomed. Pharmacothe. 2008; 62(3): 189-96. [DOI:10.1016/j.biopha.2008.02.002]
28. Noa M, Más R and Carbajal D. Effect of D-002 on acetic acid-induced colitis in rats at single and repeated doses. Pharmacol. Res. 2000; 41(4): 391-5. [DOI:10.1006/phrs.1999.0596]
29. MacPherson B and Pfeiffer C. Experimental production of diffuse colitis in rats. Digestion. 1978; 17(2): 135-50. [DOI:10.1159/000198104]
30. Fabia R, Willen R, Ar'Rajab A, Andersson R, Ahren B and Bengmark S. Acetic acid-induced colitis in the rat: a reproducible experimental model for acute ulcerative colitis. Eur. Sur. Res. 1992; 24(4): 211-25. [DOI:10.1159/000129209]
31. Hagar HH, El Medany A, El Eter E and Arafa M. Ameliorative effect of pyrrolidinedithiocarbamate on acetic acid-induced colitis in rats. Eur. J. Pharmacol. 2007; 554(1): 69-77. [DOI:10.1016/j.ejphar.2006.09.066]
32. McKelvey-Martin V, Green M, Schmezer P, Pool-Zobel B, De Meo M and Collins A. The single cell gel electrophoresis assay (comet assay): a European review. Mutat. Res. 1993; 288(1): 47-63. [DOI:10.1016/0027-5107(93)90207-V]
33. Chern CM, Liao JF, Wang YH and Shen YC. Melatonin ameliorates neural function by promoting endogenous neurogenesis through MT2 melatonin receptor in ischemic stroke mice. Free Rad. Biol. Med. 2012; 52(9): 1634-1647. [DOI:10.1016/j.freeradbiomed.2012.01.030]
34. Jung HC, Eckmann L, Yang S-k, Panja A, Fierer J, Morzycka-Wroblewska E and et al. A distinct array of proinflammatory cytokines is expressed in human colon epithelial cells in response to bacterial invasion. JCI. 1995; 95(1): 55-65. [DOI:10.1172/JCI117676]
35. Abreu MT. Toll-like receptor signalling in the intestinal epithelium: how bacterial recognition shapes intestinal function. Nat. Rev. Immunol. 2010; 10(2): 131. [DOI:10.1038/nri2707]
36. Lih-Brody L, Powell SR, Collier KP, Reddy GM, Cerchia R, Kahn E and et al. Increased oxidative stress and decreased antioxidant defenses in mucosa of inflammatory bowel disease DIGEST. 1996; 41(10): 2078-86. [DOI:10.1007/BF02093613]
37. Berg DJ, Davidson N, Kühn R, Müller W, Menon S, Holland G and et al. Enterocolitis and colon cancer in interleukin-10-deficient mice are associated with aberrant cytokine production and CD4 (+) TH1-like responses. JCI. 1996; 98(4): 1010-20. [DOI:10.1172/JCI118861]
38. Zigmond E, Bernshtein B, Friedlander G, Walker CR, Yona S, Kim K-W and et al. Macrophage-restricted interleukin-10 receptor deficiency, but not IL-10 deficiency, causes severe spontaneous colitis. Immunity 2014; 40(5): 720-33. [DOI:10.1016/j.immuni.2014.03.012]
39. Kojouharoff G, Hans W, Obermeier F, MA NNEL D, Andus T, SCHO LMERICH J and et al. Neutralization of tumour necrosis factor (TNF) but not of IL‐1 reduces inflammation in chronic dextran sulphate sodium‐induced colitis in mice. J. Clin. Exp. Immunol. 1997; 107(2): 353-8. [DOI:10.1111/j.1365-2249.1997.291-ce1184.x]
40. West G, Matsuura T, Levine A, Klein J and Fiocchi C. Interleukin 4 in inflammatory bowel disease and mucosal immune reactivity. Gastroenterol. 1996; 110(6): 1683-95. [DOI:10.1053/gast.1996.v110.pm8964392]
41. Bertevello PL, Logullo ÂF, Nonogaki S, Campos FM, Chiferi V, Alves CC and et al. Immunohistochemical assessment of mucosal cytokine profile in acetic acid experimental colitis. Clinics 2005; 60(4): 277-86. [DOI:10.1590/S1807-59322005000400004]
42. Boirivant M, Fuss IJ, Chu A and Strober W. Oxazolone colitis: a murine model of T helper cell type 2 colitis treatable with antibodies to interleukin 4. JEM. 1998; 188(10): 1929-39. [DOI:10.1084/jem.188.10.1929]
43. Rees V. Chronic experimental colitis induced by dextran sulphate sodium (DSS) is characterized by Th1 and Th2 cytokines. Clin. Exp. Immunol. 1998; 114(3): 385-91. [DOI:10.1046/j.1365-2249.1998.00728.x]
44. Cheah KY, Bastian SE, Acott TM, Abimosleh SM, Lymn KA and Howarth GS. Grape seed extract reduces the severity of selected disease markers in the proximal colon of dextran sulphate sodium-induced colitis in rats. Dig. Dis. Sci. 2013; 58(4): 970-7. [DOI:10.1007/s10620-012-2464-1]
45. Dharmani P, Leung P and Chadee K. Tumor necrosis factor-α and Muc2 mucin play major roles in disease onset and progression in dextran sodium sulphate-induced colitis. PloS One 2011; 6(9): e25058. [DOI:10.1371/journal.pone.0025058]
46. da Silva MS, Sánchez-Fidalgo S, Talero E, Cárdeno A, da Silva MA, Villegas W and et al. Anti-inflammatory intestinal activity of Abarema cochliacarpos (Gomes) Barneby & Grimes in TNBS colitis model. J. Ethnopharmacol. 2010; 128(2): 467-75. [DOI:10.1016/j.jep.2010.01.024]
47. De Almeida ABA, Sanchez-Hidalgo M, Martín AR, Luiz-Ferreira A, Trigo JR, Vilegas W and et al. Anti-inflammatory intestinal activity of Arctium lappa L.(Asteraceae) in TNBS colitis model. J. Ethnopharmacol. 2013; 146(1): 300-10. [DOI:10.1016/j.jep.2012.12.048]
48. Ding TT. Therapeutic effects of Clostridium butyricum on experimental colitis induced by oxazolone in rats. WJG. 2009; 15: 007. [DOI:10.3748/wjg.15.1821]
49. Yang J, Zhao J, Nakaguchi T and Gregersen H. Biomechanical changes in oxazolone-induced colitis in BALB/C mice. J. Biomechanics 2009; 42(7): 811-7. [DOI:10.1016/j.jbiomech.2009.01.028]
50. Morris GP, Beck PL, Herridge MS, Depew WT, Szewczuk MR and Wallace JL. Hapten-induced model of chronic inflammation and ulceration in the rat colon. Gastroenterol. 1989; 96(2): 795-803. [DOI:10.1016/S0016-5085(89)80079-4]
51. Isik F, Akbay TT, Yarat A, Genc Z, Pisiriciler R, Caliskan-Ak E and et al. Protective effects of black cumin (Nigella sativa) oil on TNBS-induced experimental colitis in rats. Dig. Dis. Sci. 2011; 56(3): 721-30. [DOI:10.1007/s10620-010-1333-z]
52. Elson CO, Sartor RB, Tennyson GS and Riddell RH. Experimental models of inflammatory bowel disease. Gastroenterol. 1995; 109(4): 1344-67. [DOI:10.1016/0016-5085(95)90599-5]
53. Yu Q, Zhu S, Zhou R, Yi F, Bing Y, Huang S and et al. Effects of sinomenine on the expression of microRNA-155 in 2, 4, 6-trinitrobenzenesulfonic acid-induced colitis in mice. PloS One. 2013; 8(9): e73757. [DOI:10.1371/journal.pone.0073757]
54. Ni J, Chen S and Hollander D. Effects of dextran sulphate sodium on intestinal epithelial cells and intestinal lymphocytes. Gut. 1996; 39(2): 234-41. [DOI:10.1136/gut.39.2.234]
55. Heller F, Fuss IJ, Nieuwenhuis EE, Blumberg RS and Strober W. Oxazolone colitis, a Th2 colitis model resembling ulcerative colitis, is mediated by IL-13-producing NK-T cells. Immunity. 2002; 17(5): 629-38. [DOI:10.1016/S1074-7613(02)00453-3]
56. Tahan G, Gramignoli R, Marongiu F, Aktolga S, Cetinkaya A, Tahan V and et al. Melatonin expresses powerful anti-inflammatory and antioxidant activities resulting in complete improvement of acetic-acid-induced colitis in rats. Dig Dis. Sci. 2011; 56(3): 715-20. [DOI:10.1007/s10620-010-1364-5]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
